一、材料和試劑
1、0.01M PBS（pH7.4）： NaCl 8.0g； KCl 0.2g； Na2HPO4 1.44g； KH2PO4  0.24g； ddH2O至1000ml ； 高壓滅菌,分裝。
2、0.25%胰酶：稱取EDTA 0.02g   NaCl   0.8g  KCl  0.04g  加三蒸水100ml溶解后加0.25g 胰酶,輕輕攪動,使胰酶溶解,不要產生泡沫,加酚紅少許,調PH值到8.2-8.6,過濾除菌,分裝10ml/管,-20℃保存,臨用前預溫到37℃。
3、誘導液（TPA）：12-鄰-十四酰-佛波醇-13-乙酸酯（12-O-tetradecanoyl-phorbol-13-acetate,TPA）溶于丙酮，配成20mg/ml。
                                      
二、實驗步驟   
（一）        、用96孔細胞培養板制備貼壁細胞抗原（正常貼壁細胞）
        1、HFF,NIH3T3細胞用含10%血清DMEM*培養液在75cm2培養瓶中單層培養,使密度達到90%
          2、傾去培養液,用無菌PBS液5-10ml洗細胞一次,用無菌吸管吸干PBS液。
           3、加0.25%胰酶（從-20℃取出,在37℃預溫）75平方厘米培養瓶加1ml,37℃溫箱或有經驗者可在酒精燈周圍,控制溫度約37℃左右,輕輕搖勻使胰酶充分覆蓋細胞表面。
     4、觀察到細胞有松動,成流沙狀下落;或在顯微鏡下觀察,細胞已有收縮變圓時,用無菌PBS液15-20ml,終止反應。
5、輕輕吹打下細胞,使細胞單個分散,并充分混勻1500轉/分離心5-10分鐘,去掉上清液
  6、打散細胞,加10ml含血清DMEM*培養液混勻,取10ul在顯微鏡下計數,計算細胞濃度。
          7、用含10%血清培養液調整細胞濃度至1×104個/100ul,每孔（96孔）接種200ul（即2×104個細胞/孔）,37℃ CO2培養箱培養。
          8、次日顯微鏡下觀察,細胞是否*貼壁（一般24小時可*貼壁）倒去培養 0.01M PBS液先二次（孔中加滿PBS,輕輕倒掉）并在濾紙上扣干,反復3次）應 注意加液的力度,不能太大,以免沖掉細胞,倒去上清液在濾紙上扣干水份,但保持細胞濕潤。
9、加90%冷丙酮固定,每孔200ul,5-10min 摔去冷丙酮,用PBS洗三次,扣干。
10、在培養板上作好標記（細胞名稱,制備時間）。
11、保鮮膜封好,-70℃保存。
（二）        、懸浮細胞玻片法的抗原制備
1、 25平方厘米玻璃瓶用含10%血清的1640*培養液培養BCBL-1細胞,密度達到80-90%
2、加樣槍充分吹勻細胞,收集于離心管中。
3、1500轉/分離心5-10分鐘,棄去上清液。
4、打勻細胞,用PBS洗二次,棄去上清。
5、打勻細胞,加少量PBS液（根據肉眼觀察細胞溶液的濁度估計）混勻,取少量在顯微鏡下計數,調整濃度,估算在玻片上每個細胞涂片圈位 （12圈）接種細胞1×104個。
6、室溫下干燥,然后加100%的冷丙酮室溫固定3-5分鐘,PBST洗二遍。
7、室溫干燥,作好標記然后放入玻片盒 ,玻片盒用塑料袋密封,并放一袋防潮劑,-20℃保存,一個月內有效。
（三）        病毒感染細胞抗原的制備
1、96孔培養的貼壁細胞的病毒感染及病毒抗原的制備
1）        未感染細胞接種到96孔板（方法見”懸浮細胞玻片法抗原制備”1-5步）,并*貼壁。   
2）        摔去PBS液,加入少量病毒液（加入量由先做棋盤試驗來確定濃度,或先測定病毒滴度而定,且病毒液用2%-5%血清DMEM*培養液稀釋）,每孔50ul,搖勻,使充分覆蓋細胞表面 ,37℃ CO2培養箱培養（MCMV感染NIH3T3 HCMV感染HFF）。
3）        每天觀察細胞形態變化,早期CPE為細胞腫脹,中期聚集,晚期則圓縮。
4）        當圓縮細胞達到10%-30%左右,細胞層出現明顯的病灶,同時還有正常細胞未感染,即可收獲（一般情況下3-4天）。
5）        倒去上清（倒入有消毒液容器以防止污染環境）,用無菌PBS液洗2次（加滿培養孔,倒掉,在濾紙上扣干）。
6）        倒去上清,加90%冷丙酮室溫固定5-10min,每孔200ul 。
7）        摔去冷丙酮,用PBS洗三次,扣干。
8）        在培養板上作好標記（病毒抗原名稱,制備時間等）。
9）        保鮮膜封好,-70℃保存。
2、BCBL-1細胞的誘導和KSHV病毒抗原的制備
<1> BCBL-1細胞擴大培養，細胞密度達到50%
<2> TPA（12-0-酰佛波醇-13-乙酸酯），每毫升培養液加40ug（TPA預先配成 20mg/ml）。
<3> 誘導三天后，收集少量細胞進行ICC預實驗。
<4> KSHV陽性細胞達到10%-30%時，可做細胞涂片，陽性細胞>30%時,可用于制備病毒細胞裂解液。
<5> KSHV陽性細胞達到10%-30%時,即可收獲細胞加樣槍充分吹勻細胞,收集于離心管中。
<6> 2000轉/分離心5-10分鐘,棄去上清液。
<7> 打勻細胞,用PBS洗二次,棄去上清。
<8> 打勻細胞,加少量PBS液（根據肉眼觀察細胞溶液的濁度估計）混勻,取少量在顯微鏡下計數,調整濃度, 估算在玻片上每個細胞涂片圈位 （12圈）接種細胞1×104個。
項目        MCMV        HCMV        KSHV
血清稀釋度        1:50   1:100    1:200        1:100  1:500   1:1000        1:50  1：100   1:200
測血清用二抗       
HRP-Anti  Mouse  IgG（fc）   Sigma
或HRP-Anti  Mouse IgG+A+M   Sigma        Bio-Anti mouse IgG F（ab’）2  Sigma        HRP-Anti  Mouse  IgG（fc）   Sigma
或HRP-Anti  Mouse IgG+A+M   Sigma
測上清用二抗        Bio-Anti mouse IgG F（ab’）2  Sigma        Bio-Anti mouse IgG F（ab’）2  Sigma        HRP-Anti  Mouse  IgG（fc）   Sigma
或HRP-Anti  Mouse IgG+A+M   Sigma
<9> 室溫下干燥,然后加100%冷丙酮室溫固定3-5分鐘,PBST洗二遍。
<10>室溫干燥,作好標記后放入玻片盒,玻片盒用塑料袋密封,并放一袋防潮劑,-20℃保存,一個月內有效。

三、說明
1、        測病毒細胞ICC血清稀釋度及使用的二抗


2、細胞病變作用分三種類型
1）        全變型：即整個細胞都發生改變。
<1>整個細胞都發生腫脹,胞漿呈顆粒樣變,胞膜邊緣不整齊。
<2>整個細胞都發生皺縮,變圓直至碎裂,脫落等,多見于病毒。
2）        包涵體型：即反映在細胞核或細胞漿內出現病毒引起的包涵體。。
3）        融合型：即指多數病變細胞發生相互事例融合而呈”巨細胞”,但單個細胞的胞核仍可分辨。
3、細胞病變程度表示方法
   通觀整個”單層區”權衡總的情況,雙下列符號表示其病變程度:
?        無細胞病變
?        +    25%以下的細胞有病變
?        ++   25%-50%的細胞有病變
?        +++  50%-75%的細胞有病變
?        ++++ 75%-100%的細胞有病變

四、注意事項
1、病毒液應保存在-70℃,4℃保存病毒液病毒滴度會降低,保存不長久。
2、每次從冰箱取出抗原板或抗原片時,應在37℃預溫去掉水霧,用前要用3%的雙氧水（現配現用）除掉病毒細胞中的內源性過氧化物酶。